Un jeu d'encastrement à l'échelle atomique : l'incorporation du carbonate dans l'apatite

Au terme d'une enquête combinant approches spectroscopiques et modèles théoriques, une équipe constituée de minéralogistes et physiciens de l'IMPMC (CNRS-UPMC), de géologues de l’ISTEP (UPMC-CNRS) et de chimistes du LCMCP (UPMC-CNRS-Collège de France) et du CEMHTI (CNRS-Orléans) a enfin pu élucider ...
Chiffres-clé
chiffres clés
134 personnes travaillent à l'IMPMC
- personnels permanents
34 enseignants chercheurs
37 chercheurs
28 ingénieurs, techniciens et personnels administratifs - personnels non permanents
17 doctorants
8 post-doctorants
10 chercheurs émérites ou bénévoles
(chiffres 02/2010)
Contact
Directeur de l'institut
33 +1 44 27 52 17
Assistante de direction
33 +1 44 27 52 17
Gestion du personnel
33 +1 44 27 74 99
Chargée de communication
33 +1 44 27 46 86
A voir
Interview filmée
de Paola Giura sur le plateau télé-SUM2013 lors du Colloque des Utilisateurs de SOLEIL (Users’ Meeting)
qui s'est tenu les 23 et 24 janvier 2013 à SOLEIL et à l’Ecole Polytechnique. 
Biophysique et bioinformatique
Notre équipe étudie la structure tridimensionnelle et la dynamique de protéines et d’assemblages macromoléculaires. Dans ce but, nous utilisons la Cryo-Microscopie Electronique en Transmission (Cryo-MET) et des techniques d’analyse d’images et de reconstruction tridimensionnelle (3D), permettant souvent d'atteindre des résolutions subnanométriques. Nous développons des méthodes d’analyse d’images permettant d’une part d’identifier l’hétérogénéité structurale et conformationnelle des échantillons étudiés, d'autre part de dépasser les limites actuelles de la résolution obtenue après reconstruction. Toujours dans le but d'atteindre de très hautes résolutions, nous mettons également en place de nouvelles stratégies pour la cristallisation des protéines solubles et membranaires en 2D (cristaux 2D), soit sous une monocouche lipidique à l’interface air-eau soit sur un support préformé. Par ailleurs, nous utilisons des techniques de modélisation et des méthodes sensibles d’analyse de séquences pour prédire les structures et fonctions des protéines. Ces dernières incluent la méthode HCA (Hydrophobic Cluster Analysis), développée au laboratoire depuis la fin des années 1980 et outil puissant pour décrypter les séquences de protéines « orphelines » (laissées sans informations par les traitements bioinformatiques standards).
Ainsi, les approches de Cryo-MET 3D et de modélisation moléculaire combinées avec d'autres techniques de biologie structurale (diffusion de la lumière, SAXS, SANS, cristallographie des rayons X, Résonnance Magnétique Nucléaire (RMN), analyse des Modes Normaux (AMN), etc..) permettent de fournir une vision dynamique multi-échelles des assemblages macromoléculaires en action.
Les recherches menées dans notre groupe portent sur les protéines et assemblages protéiques qui sont difficiles à étudier d'un point de vue expérimental par des techniques plus traditionnelles telles que la cristallographie aux rayons X et la résonance magnétique nucléaire (RMN), ou encore, d'un point de vue théorique, par les voies conventionnelles de la bioinformatique. Par exemple nous étudions des protéines du signalement tels que la Phosphorylase Kinase (PhK), des complexes ribosomiques, et des protéines intervenant dans la réparation de l'ADN et la régulation des télomères. Des protéines membranaires telles que CFTR, des canaux à potassium (KirBac) et HCN, sont aussi étudiées dans notre équipe.
Dans cette rubrique
- Liste des membres
- Equipements
- Principales collaborations
- Faits marquants
- Observer dans le détail les changements de conformation des cana
- Vers une meilleure compréhension de la mucoviscidose
- Les enjeux du modèle moléculaire de CFTR
- Salon de la culture et des jeux mathématiques 2011
- nouvelle voie vers fabrication de réseaux cristallins
- Croissance protéines membranaires
- Comment s’ouvrent et se ferment les canaux à potassium Kir




